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목차

1. 실험 목적

2. 실험 이론
1) Fisher-Race 이론 : DCE 표현
2) Wiener 이론 : Rh-Hr 표현
3) Rosenfield의 표현
4) ISBT(국제수혈학회, International Society of Blood Transfusion)

3. 실험 재료

4. 실험 방법

5. 실험 결과

6. 고찰
1) 비예기항체 양성 환자와 RhD 양성군간의 Rh표현형 빈도 차이
2) 혈구부유액의 문제
3) 수혈하였을 때 항체 생성여부
4) Rh 아형

본문내용

1. 실험 목적
Rh 표현형 검사를 통해 Rh 표현형 D, C, E, c, e의 결과를 판독하고 같은 혈액형의 기준으로 Rh 표현형이 다른 학생들끼리 수혈하였을 경우 나타나는 항체생성여부에 대해 알 수 있다.

2. 실험 이론
Rh 혈액형 종류는 C, c, D, E, e 등을 포함하여 47가지나 되지만, 일반적으로 Rh 양성 또는 음성이라고 말할 때는 Rh 혈액형 항원 중에서 가장 면역원성이 큰 D항원의 유무를 말한다. D항원은 면역원성이 높으므로 D항원 음성인 사람이 D항원 양성 혈액을 수혈받을 경우 50~80% 정도에서 anti-D를 형성한다. 그러므로 모든 수혈자와 공혈자 혈액에 대해서는 Rh(D) 혈액형 검사를 시행해야 하며 D항원 음성인 환자에게는 D 항원 양성인 혈액을 수혈해서는 안 된다. Anti-D 혈청으로 적혈구의 Rh(D) 항원의 존재여부를 확인하여 응집이 있으면 Rh(D) 양성, 응집이 없을 시에는 Weak-D검사를 추가적인 검사를 시행하여 Rh(D) 음성으로 판독한다.
1) Fisher-Race 이론 : DCE 표현
1943년 영국의 유전학자 Fisher와 Race는 1번 염색체 단완부에 근접하여 연결된 Rh 유전자는 3쌍의 유전자에 의해 결정된다고 하였다. 유전자의 위치는 첫 번째 D-d, 두 번째 C-c 또는 Cw, 세 번째는 E-e 순으로 구성되는데 d 유전자는 실제로는 없는 무정형이며 D 유전자가 없음을 의미한다. 또한 이 유전자는 좌는 염색체상 근접하게 연결되어 있어 그것을 분리하기 힘들고 하나의 단위나 유전자 복합체로 다음 세대에 유전된다고 한다.

2) Wiener 이론 : Rh-Hr 표현
각각의 단일 유전자는 각각 한 개의 응집원으로 적혈구표면의 여러 개의 항원 인자로 구성 되어있다는 가설이다. 예를들면 R 인 단일 유전인자는 최소한 세 개의 인자(Rho, hr’, hr’‘)들로 구성되어 있는 응집원을 생산하여 적혈구 표면에 Rho, hr’, hr’‘항원을 만들어서 Rho(Dce) 표현형이 된다는 것이다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적

2. 실험 원리

3. 실험 재료

4. 실험 방법
가. 혈구형 검사
나. 혈청형 검사
다. 추가 검사

5. 실험 결과 및 고찰

본문내용

1. 실험 목적
적혈구 표면의 항원들은 그 구성과 조합에 개인마다 조금씩 차이가 있으며, ABO 혈액형을 비롯하여 Rh, MNSs, Duffy, Kidd, Kell, Lewis 등 여러 종류의 적혈구 혈액형 항원들이 존재한다. 이렇게 수많은 혈액형들 중에서 가장 중요한 것은 ABO & Rh 혈액형이기 때문에 부적합 혈액형 항원과 항체 반응으로 나타나는 임상 증상의 예방 목적으로 혈액형 검사가 필수적이다.

2. 실험 원리
ABO & Rh 혈액형 검사는 환자의 안전을 위해 수혈 전 검사로 반드시 시행한다. 만약 ABO 혈액형 불일치 혈액을 수혈하면 급성 용혈성 수혈부작용을 일으킬 수 있기 때문에 수혈 전 검사과정에서 적혈구가 응집반응을 보이면 육안으로 적혈구 항원과 항체의 반응을 확인할 수 있고, 이때 현미경 관찰도 필수적이다. 그래서 ABO & Rh 혈액형 검사가 필요한 경우로 수혈 시, 헌혈 시, 장기 이식, 골수 기증, 산부인과 환자의 산전검사 및 신생아의 혈액형 확인검사를 할 경우 ABO & Rh 혈액형 검사가 필수적이다.

– ABO 혈액형 검사원리
Anti-A와 anti-B가 각각 해당되는 A항원 및 B항원과 체내에서 만나면 적혈구를 파괴시키는 용혈현상이 발생하지만, 체외에서 검사를 시행할 때에는 육안으로 관찰 가능한 적혈구의 응집반응이 일어난다. ABO 혈액형 검사는 이러한 적혈구의 응집반응을 원리로 이용하여 이루어지는데, 혈구형 검사와 혈청형 검사 두 가지 방법으로 시행된다. 혈구형 검사에서는 검사 대상자의 적혈구를 anti-A 및 anti-B 시약과 반응을 시키고, 혈청형 검사에서는 검사 대상자의 혈청(혈액 내의 세포 구성물을 제외한 액체 성분)을 A형 및 B형 혈구 시약과 반응을 시켜 각각의 응집 여부를 확인하여 혈액형을 판정한다. 그래서 ABO혈액형 검사는 반드시 두 가지 검사결과가 일치해야 혈액형이 판정이 되고 혈구형검사와 혈청형검사의 결과가 일치하지 않는 경우는 여러 가지 원인이 있으며 그 원인을 밝힌 뒤에 혈액형을 판정할 수 있다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험목적

2. 실험재료

3. 실험원리

4. 실험방법

5. 실험결과

6. 고찰
1) ESR에 영향을 주는 인자들
2) ESR 측정법

본문내용

1. 실험목적
적혈구의 침강속도를 측정하여 임상적의의를 알아본다.

2. 실험재료
주사기, 폐침통, 알콜솜, 토니켓, 베개, 반창고, 전혈(검체), 측정관, 혈침대, Sodium citrate

3. 실험원리
전혈을 측정관에 넣고 수직상태로 방치하면 적혈구는 비중의 차이에 의해 아래로 가라앉는 현상을 볼 수 있다. 건강한 사람의 적침은 비교적 서서히 가라앉지만, 질환이 진행중인 경우는 빨리 가라앉 으므로 질병 진행 시 비교적 예민한 검사이다. 그러나 비특이적인 반응이기 때문에 특정의 질병진단 이나 상태에 대한 정확한 정보는 되지 못하지만 임상증상, 신체소견 외에 각종검사 성적을 참고하면 감별진단, 질환의 활동상태, 치료 및 예후의 판정 등에 중요한 자료로 활용된다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적

2. 실험원리

3. 실험재료

4. 실험 이론
1) 혈색소(HemogLobin)의 정의
2) 혈색소(HemogLobin)를 측정하는 이유
3) 혈색소(HemogLobin)의 정상 수치

5. 실험방법

6. 실험 결과 및 고찰
1) 적혈구 수치에 따른 임상증상
2) 분광광도계(spectrophotometer)의 원리

본문내용

1. 실험 목적
채혈을 한 후 조원들과 혈색소 농도를 측정하여 각 조원들과 혈색소의 농도를 비교해본다.

2. 실험 목표
채혈 복습을 한 후 채혈을 통해 뽑은 혈액으로 혈색소의 농도를 측정하는 방법을 익힌다.
각 조원들의 혈액으로 검체를 만들어 분광광도계를 돌린 후 흡광도를 구하여 혈색소의 농도를 구해본다.

3. 실험 재료
주사기, 폐침통, 채혈베개, 알콜솜, 토니켓, 홀더, 반창고, 니들, 진공채혈관, 각 조원들의 피, 분광광도계, Drakin’s 시약, 마이크로피펫, 큐벳, 헤모글로빈 표준 용액

4. 실험 이론
– 혈색소(HemogLobin)의 정의
: 적혈구의 주요성분으로 산소와 이산화탄소를 운반하는 역할을 수행하는데 혈색소(Hemoglobin)는 헴(heme)이라는 철분과 글로빈(globin)이라는 단백이 결합되어 있으며, 이 헴의 철분이 산소와 결합하여 산소를 전신의 조직 세 포로 운반하고 그 대신에 이산화탄소를 운반한다.

– 혈색소(HemogLobin)를 측정하는 이유
: 혈색소를 측정하고 검사하는 이유는 혈액 검체 내의 적혈구에서 발견되는 단백질인 혈색소의 양을 측정함으로 써 혈액의 능력을 알 수 있는데, 산소가 조직과 장기로 잘 운반되고 있는지, 노폐물인 이산화탄소가 폐로 잘 운반되 고 있는지 알아낼 수 있다. 또한, 환자의 혈색소 수치가 낮으면 빈혈이 있을 가능성이 있는데 빈혈이란 몸에 산소가 부족하여, 피로감과 쇠약감을 일으키는 상태이다.

– 혈색소(HemogLobin)의 정상 수치
혈색소의 정상범위는 나라의 검사기간별로 약간 씩 차이가 있는데 한국서울대학병원에서 성인의 혈색소 정상범위로 남자는 13~17g/dL, 여자는 12~16g/dL으로 기준이 잡혀있다. 그래서 이 수치를 기준으로 오늘 할 실험에 대한 결 과값과 비교할 것이다.

5. 실험 방법
1) 각 조원들의 혈액을 채혈한다
2) Drakin’s 시약 5ml와 혈액 0.02ml을 15ml 튜브에 넣고 잘 섞는다. (총 3개)

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적
2. 실험재료
3. 실험원리
4. 실험방법
5. 실험 결과
6. 고찰

본문내용

1. 실험목적
각 조원들의 혈액을 채취한 후 초생체 염색을 하여 그물적혈구를 측정할 수 있다.

2. 실험재료
마이크로피펫, 팁, EP tube, 주사기, EDTA, 팔베게, 토니켓, 니들, 홀더, 폐침통, 반창고, NMB, 현 미경, 알코올 솜, 봉입제, 커버글라스, 슬라이드 글라스, Immersion oil, 카운터

3. 실험원리
– 그물적혈구(Reticulocyte)검사란?
그물적혈구는 미성숙 적혈구로 골수에서 생성된 줄기세포는 적혈구 분화단계를 거쳐 그물적혈구에서 성숙 적혈구로 분화한다. 대부분의 적혈구는 완전히 성숙한 단게에서 골수에서 혈액으로 나가지만, 일부는 그물적혈구 상태로 혈액으로 들어가기 때문에 혈액의 적혈구 중 약 0.5-2%는 그물적혈구이 다. 그물적혈구 검사는 혈액의 그물적혈구의 수와 비율을 측정하여 골수의 적혈구 생성이 적절한지 를 평가할 수 있게 한다. 그물 적혈구는 성숙한 적혈구와 비교하여 부피가 약 24% 더 높다. 체내의 다른 대부분의 서페와는 달리, 성숙한 적혈구는 핵을 갖지 않지만 망상 적혈구는 여전히 일부 잔여 유전 물질(RNA)을 가지고 있다. 그물적혈구가 성숙함에 따라 그들은 마지막 잔여 RNA를 잃어 버리 고 대부분은 골수에서 혈액으로 방출되는 하루 이내에 완전히 발달한다. 그물 적혈구 또는 백분율은 적혈구를 적정하게 생산할 수 있는 사람의 골수 능력을 나타내는 좋은 지표이다. 적혈구는 전형적으 로 순환에서 약 120일 동안 생존하고 골수는 출혈을 통해 노화되고 퇴화되거나 손실된 것들을 대체 하기 위해 지속적으로 새로운 적혈구를 생산한다. 정상적으로, 저하 된 또는 손실된 적혈구의 지속 적인 교체를 통해 혈액 내에서 안정한 수의 적혈구가 유지된다. 심각한 출혈을 초래할 수 있는 상태 이외에 다양한 질병 및 상태가 새로운 적혈구의 생성 및 생존에 영향을 미칠 수 있다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적
2. 실험원리
3. 실험재료
4. 실험방법
5. 실험 결과
6. 고찰

본문내용

1. 실험 목적
자동 혈구 분석기를 사용하여 각 항목의 의미를 알아본다.

2. 실험 원리
이번 실습 때 사용한 자동분석기는 혈구 자동분석기의 원조라고 할 수 있는 기기인 Beckman-Coulter와 유사하다.
측정원리로 개발 초기에는 기본적으로 VCS system만을 사용해 왔으나 지금은 이를 바탕으로 다른 장치 즉 빛 산란 검출법(light scatter detection)을 적용하여 형광물질 염색 후 형광 산란을 통해 많은 종류의 혈구를 분석할 정도로 신속, 정확성을 보여준다. 기본적으로 검체는 2개의 채널로 구성되어 있으며 첫 번 째는 등장액에 부유된 전혈(whole blood)액이 적혈구 측정 aperture chamber로 들어간다. 적혈구와 혈 소판이 전기저항 법에 의해 측정된다. sensing aperture 3개는 각각 지름이 50um되고 길이가 60um로 되어있다. 혈소판은 2~20fL 크기 내에서 적혈구는 36fL 이상 크기 내에서 측정이 된다.
두 번째 채널로 들어간 희석액에서는 백혈구와 혈색소가 측정된다. 백혈구도 전기 저항법에 의해 측정되 는데 희석된 전혈에 적혈구 용해제(lysin)를 가하게 되면 적혈구는 용해되고 백혈구만 남는다. sensing aperture는 지름이 100um되고 길이가 75um로 되어있다. 백혈구가 측정되면 이 용액은 파장 525nm에 서 혈색소가 측정된다.
WBC와 RBC는 256채널을 사용하고 혈소판은 64채널을 사용하여 세포 크기분포인 histogram이 만들어 진다. 출력 히스토그램을 보면 림프구는 37~90fL크기에서 90~160fL에서는 blast, 미성숙과립구, 비정형림 프구가 포함된 단핵구가 계산된다. 과립구는 160~450fL 사이에서 나타난다. 3종류의 혈구 정보는 검출기 를 통해 분석되고 histogram을 통해 혈구 특성 및 절대적인 수가 환산된다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적

2. 실험원리
1) 자동혈구분석기의 종류와 원리
2) Hemoglobin 농도
3) RBC, WBC count
4) WBC differential count

3. 실험재료

4. 실험방법

5. 실험 결과
1) 자동혈구분석기의 결과 (22.9.21 기준으로 Hb농도 및 RBC, WBC Count 실습)
2) HGB 농도 측정 결과
3) RBC, WBC Count 결과
4) 자동혈구분석기 결과2 (22.09.14 기준으로 WBC diff Count 실습)

6. 고찰

본문내용

1. 실험 목적
자동혈구분석기의 CBC 결과와 Manual 법을 이용하여 실습한 RBC, WBC diff 및 혈색소 농도를 측정하면서 오차범위에 대하여 비교할 수 있다.

2. 실험원리
1) 자동혈구분석기의 종류와 원리
– Coulter사
전기저항법을 사용하며 전기저항은 세포의 부피에 빈도는 세포의 수에 비례한다. 적혈구와 혈소판은 크기에 따 라 분류하는데 2~20fL 크기를 혈소판으로 37fL 크기 이상을 적혈구로 센다. 백혈구는 림프구와 단핵구(비정형림 프구, 미성숙 과립구, blast 포함), 과립구 3가지 종류를 count 할수 있다. 37~90fL 크기를 림프구로, 90~160fL 크기를 단핵구(비정형림프구, 미성숙 과립구, blast 포함)로, 160~450fL 크기를 과립구로 측정한다. Hb은 cyanmet-Hb법을 사용하고 Hct은 측정된 MCV값에서 유도한다. 우리가 사용한 자동혈구 분석기는 Coulter사와 유사하다.

– Sysmex사
전기 전도도법을 사용하며 DC와 RF를 통해 세포의 크기와 세포내 밀도를 측정한다. 유세포 분석법을 통해 WBC는 5개(림프구, 단핵구, 호중구, 호산구, 호염기구)를 측정할 수 있다. 형광 염료인AuraminO를 사용하여 그 물적혈구와 성숙지수까지 알 수 있다. Hct를 측정하고, MCV를 계산한다.

– Advia사
5가지 채널로 나누어져 있다. 첫번째는 RBC/Platelet 채널이다. 두번째는 Hb 채널로 cyanmet-Hb법을 사용하 여 Hb를 비색 측정한다. 세번째는 Peroxidase 채널로 세포화학 염색(peroxidase)을 통해 세포를 구별한다. 양 성인 세포(호중구, 호산구)는 오른쪽에, 음성인 세포(림프구, 호염기구)는 왼쪽에, 약 양성인 단핵구는 중간지점에 나타난다. 네번째는 BASO분엽화 채널로 산성용액에 호염기구가 저항하는 성질을 이용한다. 다섯번째는 그물적 혈구 채널로 Oxazine750으로 형광염색하여 유세포분석으로 측정한다. Hct은 측정된 MCV 값에서 유도한다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험목적
2. 실험재료
3. 실험이론
4. 실험과정 및 방법
5. 실험결과 및 고찰
6. 출처 및 참고문헌

본문내용

1. 실험목적
각 조원의 혈액을 채취하여 혈액안에 있는 RBC와WBC을 희석염색하고 현미경과 chamber을 이용하여 측정할 수 있다.

2. 실험재료
주사기, 토니켓, 팔베게, EDTA튜브, 알코올솜, 홀더, 니들, 폐침통, 마이크로 피펫, 팁(1000ul, 200ul, 20ul), 반 창고, 현미경, 커버글라스, Nebauer챔버, 생리식염수, Turk용액, 수동카운터기

3. 실험이론
– 적혈구(RBC, Red BLood CeLL)
전체 혈구의 45%를 차지하며, 신체의 모든 세포로 산소운반을 하는 가운데가 패인 원반모양의 붉은색 혈액세포이다.
기능으로 산소운반이 있는데 철이온을 가진 헤모글로빈에 의해 적혈구가 산소를 운반하게 된다. 대사 활동 부분에서는 대사 후 산물들로 인해 산도가 낮아져 산소가 떨어져 나가 필요한 곳에서 쓰이게 되고 적혈구는 혈액을 돌아다니면서 이러한 역할을 한다. 혈액 내 적혈구가 감소하거나 낮으면 혈액이 운반하는 능력이 저하되어 빈혈을 발생한다.

<중 략>

– 측정값에 대한 오류원인
혈구를 세는 것에 있어서 각 학생들이 오차가 심하게 나타나게 되었다. 처음 하는 실습이고 익숙치 않기 때문에 완벽하게 실습하는 것에 있어서 어렵다고 판단되었다. 그래서 처음 희석하는 과정부터 오류가 나타나게 되었고 전체적인 오류에 대한 결과라고도 볼 수 있다고 추측한다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적
2. 실험 이론
3. 실험 재료
4. 실험 방법
5. 실험 결과
6. 고찰
7. 출처 및 참고문헌

본문내용

1. 실험 목적
혈액 내 혈구의 형태관찰에는 혈액을 얇게 slide glass 위에 도말(smear)하고 염색을 한 표본을 현미경으로 관찰하는 방법이 오래전부터 이용되어 왔으나 현재에는 혈구 자동분류기(auto differential counter)가 개발되어 쉽게 분리해 내고 있다. 그러나 비정상적인 혈구의 출현이 있는 경우에는 혈구 자동분류기의 분류한계로 인해 아직까지 가장 우수한 방법으로서 혈구 감별 전문 능력이 있는 사람에 의해 현미경적 관찰을 통해 감별하고 있다.
그래서 이번 실험을 통해 도말(smear)의 직접적인 도전과 염색을 통하여 백혈구를 관찰하고 추가적으로 병적인 혈구들의 비교관찰을 한다.

2. 실험 이론
혈구의 형태는 채혈 후 보존시간과 항응고제에 의해 변화하는 경향이 있으므로, 채혈 직후 항응고제를 포함하지 않은 혈액으로 도말하는 것이 가장 이상적이다. 모세혈관을 이용하든가 정맥혈의 경우에는 채혈 즉시 항응고제와 혼합하기 전 혈액을 도말하는 것이 좋다. 편리하게 EDTA염을 첨가시킨 정맥혈은 3시간 이내에 도말, 염색하면 큰 차이가 없는 것으로 보고 있다. 그러나 이상 세포 출현 시에는 채혈 직후에 표본을 작성하는 것이 분류오차를 줄이는 최선의 방법이 된다.
– 도말의 종류
도말법에는 slide glass법과 cover glass법이 있다. 전자는 한 장의 slide glass에 한 방울의 혈액을 떨어뜨리고 한 장의 다른 도말 전용 slide glass (spreader slide)를 약 30도 위치에 중첩시키고 혈액을 잘 편 후에 퍼진 혈액을 밀어 도말하는 방법이다. 후자는 cover glass 중앙에 혈액을 한 방울 올려놓고 다른 cover glass를 중첩시켜 서로 반대편으로 잡아당겨 도말하는 방법이다.

출처 : 해피캠퍼스

목차

1. 실험 목적
2. 실험 목표
3. 실험 재료
4. 진공채혈관의 사용 및 용도
5. 실험 방법
6. 실험 결과 및 고찰
7. 출처 및 참고문헌

본문내용

1. 실험 목적
채혈의 최종적인 목표는 혈액검사이다. 혈액은 우리 몸과 관련된 많은 정보를 가지고 있기 때문에 혈액에서 의학적 정보를 얻는다. 그래서 질병의 유무, 무기질 영양상태, 의약품의 효과, 장기 기능 등 생리적 및 생화학적 상태를 검사하기 위해서 사용된다.

2. 실험 목표
팔과 손등에 있는 혈관을 찾는 연습을 하고 채혈의 기본적인 과정을 배우며 정맥 채혈에 사용되는 주사기, 베큐테이너를 숙지한다.
각 항응고제 튜브의 사용원리 및 용도를 익히고 항응고제 튜브에 피를 보관했을 때 나타나는 반응을 관찰한다.

3. 실험 재료
주사기, 폐침통, 채혈베개, 알콜솜, 토니켓, 홀더, 반창고, 니들, 항응고제, 인공모형 팔

<중 략>

6. 실험 결과 및 고찰
(1) 채혈과정 및 결과 (그림1~3)
실험 조원과 돌아가면서 채혈실습을 하였다. 혈관을 찾는 과정은 시간이 지나면서 숙지가 되었지만 혈관을 찌르는 과정은 아직까지 무서움과 미안함이 동반되어 어려워하게 되었다. 그래서 조원 4명 모두 팔꿈치 안쪽에 있는 정맥혈관의 혈액을 채취하는 것은 성공하였으나 손등정맥을 채취하는 것은 연속적으로 실패하였다. 손등의 경우 주로 실패하는 이유는 혈관이 보이지 않거나 나비침의 사용이 아직은 미숙하다고 판단된다. 왜냐하면 손등채혈을 시도 한 후 미세하게 빗겨 찌르는 경우가 많았기 때문이다. 추가적으로 손등채혈이 팔안쪽 채혈보다 공포심을 느끼는 학생들이 많아서 손등채혈의 경우 많은 연습이 필요하다고 생각되었다

출처 : 해피캠퍼스