지식참고자료

Blog

  • 세포생리학실험_잎 색소 함량 측정_엽록소와 카로티노이드의 측정 및 비교

    목차

    Ⅰ. 서론
    Ⅱ. 재료 및 방법
    Ⅲ. 결과
    Ⅳ. 논의
    Ⅴ. 참고문헌

    본문내용

    빛 에너지는 생물학적 효과를 갖기 위해 색소에 의해 흡수되어야 한다. 산소 발생성 광합성을 수행하는 식물이 빛 에너지를 흡수하는 주요 색소는 엽록소(chrolophyll)이다. 모든 산소 발생성 광합성 생물은 엽록소 a를 포함하며, 녹색식물들은 엽록소 a가 합성되어 만들어진 엽록소 b 또한 가진다. 모든 엽록소는 가시광선 영역 중 청색 및 적색 파장을 주로 흡수한다(김우택 외 9인 공역. 2016).
    모든 광합성 생물은 카로티노이드(carotenoid)를 가지며, 이는 엽록소에 의해 잘 흡수되지 못하는 파장의 빛을 흡수해 가시광선 빛 에너지 사용을 효율적이게 만든다. 산소 발생성 광합성 생물은 광합성을 위해 400-700nm 파장의 빛을 사용하는데, 주황-노란 색소인 카로티노이드는 400-500nm의 빛을 흡수한다(김우택 외 9인 공역. 2016).
    이번 실험에서는 녹색 잎과 노란색 잎의 엽록소와 카로티노이드 함량을 측정 및 비교해보고자 한다.

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_잎 색소 함량 측정_안토시아닌의 측정 및 비교

    목차

    Ⅰ. 서론
    Ⅱ. 재료 및 방법
    Ⅲ. 결과
    Ⅳ. 논의
    Ⅴ. 참고문헌

    본문내용

    고등식물의 식물체 각 부위에 폭넓게 함유되어 있는 안토시아닌(Anthocyanin) 색소는 주로 적색, 자색, 청색을 나타내는 수용성 flavonoid 색소이다. 안토시아닌은 일반적으로 식물체의 액포 또는 세포질에 배당체 형태로 존재한다(정명근. 2004). 식물세포를 UV와 blue-green light의 피해로부터 보호하며, 식물이 다양한 스트레스에 노출되었을 때 축적되어 황산화제로 작용하며, 스트레스 처리 시 생성된 free-radicals을 제거한다고 알려져있다. 또한 상당한 양의 빛을 흡수할 수 있어 스트레스 조건에서 엽록소로 가는 quantum load를 줄여 활성산소 발생을 억제해 엽록소를 보호함으로 알려져있다(Hatier and Gould. 2008).

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_단백질 검출_BCA assay, 뷰렛반응, 닌히드린 반응

    목차

    Ⅰ. 기본정보
    Ⅱ. 서론
    Ⅲ. 실험재료 및 방법
    Ⅳ. 실험 결과 및 결론
    Ⅴ. 고찰
    Ⅵ. 참고문헌

    본문내용

    Ⅰ. 기본정보
    실험 제목: 단백질 검출
    실험 목적: 단백질에 대해서 알고, BCA assay, 뷰렛반응, 닌히드린 반응을 통해 단백질을 검출한다.

    Ⅱ. 서론
    1. 단백질(protein)
    단백질은 아미노산이 펩티드 결합으로 연결된 복잡한 사슬구조의 고분자 물질이다. 아미노산은 탄소에 아미노기(-NH2)와 카르복실기(-COOH)가 붙어있는 것이 특징이다. 자연계의 20가지의 아미노산은 아미노산이 가지는 R기의 종류에 따라 구분된다. 단백질의 존재를 증명하기 위해서는 발색반응을 사용할 수 있는데, 단백질 분자에 포함된 반응기가 특수한 시약과 어울려서 나타내는 반응이다(김기태 외 4명. 2009).

    2. BCA assay
    알칼리의 조건에서 단백질의 펩타이드 결합과 반응하여 Cu2+가 Cu+로 환원된다. 이후 2분자의 Bicinchoninic acid(BCA)가 환원된 Cu+와 배위 결합해 562nm에서 최대 흡광도를 가지는 강한 보라색을 띤다. Cu+의 생성은 곧 단백질의 농도와 비례하기 때문에 알려지지 않은 샘플의 단백질 함량은 알려진 단백질 표준과 비교하여 분광광도법으로 알아낼 수 있다(Walker, J. M.. 2009).

    3. 뷰렛반응
    뷰렛 시약은 단백질과 폴리펩티드를 검출하기 위해 사용하는 시약이다. 뷰렛시약은 원래 푸른색을 나타내나, 단백질과 반응하면 자주색을 나타내고 짧은 폴리펩티드와 반응하면 분홍색으로 변한다(김기태 외 4명. 2009). 뷰렛은 알칼리성 CuSO4(2가의 구리이온)와 반응하여 보라색의 착화합물을 만든다. 두 개 이상의 펩티드 결합을 가진 화합물도 마찬가지로 유사한 착화합물을 만들며, 단백질의 경우에는 청자색 또는 적자색을 나타낸다. 착화합물의 색은 1-2시간 정도는 안정하게 유지되나, 그 이상에서는 점점 색도가 증가한다(김기태 외 4명. 2009).

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_광합성 효율 측정_산소 발생량 비교

    목차

    Ⅰ. 서론
    Ⅱ. 재료 및 방법
    Ⅲ. 결과
    Ⅳ. 논의
    Ⅴ. 참고문헌

    본문내용

    광합성의 환원제가 물(H2O)인 녹색식물, 조류, 청록색 세균은 광합성을 통해 산소를 발생시킨다. 이처럼 산소를 발생시키는 광합성은 산소발생성(oxygenic)이라 불린다. 광계 II는 물로부터 전자를 제거하고 플라스토퀴논에 전달해 광계II 반응 중심에서의 빛 유도에 의한 전하 분리는 물로부터 전자의 흡열적 전달과 산소를 발생시키기 충분한 산화제인 P680+을 생산단다. 전자 하나의 P680+에 대한 연속적인 환원은 물이 전자 4개를 산화 과정을 통해 잃고 O2 1분자를 생산하는 과정과 짝지어진다(김우택 외 9인. 2016). 고온 등의 환경 스트레스는 직간접적으로 광계 II와 같은 광합성 기구에 손상을 줄 수 있어 광합성량의 감소로 생산량이 감소될 수 있다(오순자 외 5인. 2014). 이번 실험에서는 실온에 놓아둔 잎과 high light를 쪼여준 잎의 산소 발생량을 비교함으로 광합성 효율을 측정 및 비교해보고자 한다.

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_광합성 효율 측정_reflectance 측정

    목차

    Ⅰ. 서론
    Ⅱ. 재료 및 방법
    Ⅲ. 결과
    Ⅳ. 논의
    Ⅴ. 참고문헌

    본문내용

    식물체의 분광학적 반사율은 식물의 스트레스 정도에 따라 달라지며, 생장을 저해하는 환경조건에서 식물 잎의 반사율은 일반적으로 가시광선 영역인 380nm~760nm 혹은 적외선 영역에서 증가된다(Cater and Knapp. 2001). Normalized Difference Vegetation Index(NDVI)는 적색 밴드와 근적외선 밴드에서 녹색식물의 반사율 차이를 이용해 산출하는 평가수단으로 개발되었다. 이는 near infarred의 반사율인 NIR값에 Red 반사율을 뺀것에 NIR 값에 Red 반사율을 더한 것을 나누어 준 것이다(Tucker, 1979).
    Photochemical Reflectance Index(PRI)는 530 nm와 570 nm 파장 반사율의 비로 계산될 수 있다. 이는 식생의 광합성 능력 및 생리적 스트레스 상태를 파악하는데 용이하며, 하루 중 광 스트레스에 의해 변하는 광합성의 상대적 능력과 유의한 관계를 보인다(Zhang et al., 2017). 잎의 카로티노이드계 색소는 광합성에 직접 관여하지 않지만 빛에 항상 노출되어 있는 식물에게는 필수 기능인 열에너지 소산 작용을 담당하고 있는데, PRI는 작용의 핵심 부분인 Xanthophyll cycle의 상태를 간접적으로 표현한다(Gamon et al., 1992).

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_광합성 효율 측정_FvFm값, Yield값, NPQ값 비교

    목차

    Ⅰ. 서론
    Ⅱ. 재료 및 방법
    Ⅲ. 결과
    Ⅳ. 논의
    Ⅴ. 참고문헌

    본문내용

    식물은 광합성(photosynthesis)이라는 과정을 통해 직접적, 간접적으로 유기물의 합성을 유발시킨다. 광합성은 빛 에너지를 사용해 이산화탄소를 탄수화물로 환원시키는 과정이다. 빛을 흡수한 엽록소의 전자는 바닥상태에서 들뜬상태로 전이되는데, 들뜬상태의 전자는 불안정해 에너지를 방출하고 바닥상태로 되돌아가려는 특성이 있다. 이 에너지를 방출하는 과정에서 여분의 에너지는 열로 방출되거나, 흡수한 빛을 다시 방출하기도 하는데, 이때의 잔광을 형광이라고 한다. 따라서, 광합성 효율을 형광 세기의 변화를 통해 간접적으로 측정할 수 있다(김우택 외 9인. 2016).
    빛은 광합성 식물에 필수적이지만, 과도한 빛에 노출시 식물의 Photosystem II와 같은 광합성 기구에 손상을 미친다(Aro E. M. et al. 1993). 따라서, 과도한 빛에 노출되었을때는 Photosystem II에서 불필요한 빛들을 엽록소형광(Chlorophyll fluorescence) 혹은 비광화학적인 열(NPQ)로 발산시킨다(Krause G. H. and Weis, E. 1984). Photosystem II의 기능을 간단하게 측정할 수 있는 지표로 광화학적 효율을 나타내는 Fv/Fm과 비광화학적 형광소멸능력을 나타내는 nonphotochemical fluorescence quenching(NPQ)이 많이 사용된다(Demmig and Bjorkman, 1987). 이번 실험을 통해 실온에 놓아둔 잎과 high light를 쪼여준 잎의 Fv/Fm값, Yield값, NPQ값의 비교로 광합성 효율을 측정해보고자 한다.

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_Plasmid DNA 정제

    목차

    Ⅰ. 기본정보
    Ⅱ. 서론
    Ⅲ. 실험재료 및 방법
    Ⅳ. 실험 결과 및 결론
    Ⅴ. 고찰
    Ⅵ. 참고문헌

    본문내용

    Ⅰ. 기본정보
    실험 제목: Plasmid DNA 정제
    실험 목적: Plasmid DNA에 대해서 알고, Alkaline lysis method를 통해 Plasmid DNA를 정제한다.
    실험자:

    Ⅱ. 서론
    1. E. coli
    대장균(E.coli)은 Theodor Esherich의 이름을 따서 발견되어 명명된 박테리아이다. 특징으로는 그람음성의 간균이며, 포자 생성을 하지 않으며, 1-2 microns x 30-30 micron (1 micron = 0.001 mm)크기이고, 섭씨 37도에서 쉽게 자랄 수 있다(Viroj Wiwanitkit, 2011). 대장균(E.coli)은 원핵생물에 속하며, Plasmid DNA를 가지고 있다(심규철 외 5명).

    2. Plasmid DNA
    Plasmid DNA란 세균 속에 주 DNA와 별도로 존재하면서 증식할 수 있는 고리 형태의 DNA로, 원핵생물과 효모 등에서 발견된다(심규철 외 5명). 대장균 세포에서 분리된 Plasmid DNA는 supercoiled 형태로, 압축되어 존재한다. 이는 대장균의 DNA 길이가 대장균의 몸 크기보다 더 길기 때문에, 최대한 압축되어 세포안에 존재하기 위함이다(Klug et al.. 2017).

    출처 : 해피캠퍼스

  • 세포생리학실험_cell culture, Genomic DNA Isolation_genomic DNA 추출, total RNA 추출, 전기영동,

    목차

    Ⅰ. Title
    Ⅱ. Abstract
    Ⅲ. Introduction
    Ⅳ. Results
    Ⅴ. Discussion
    Ⅵ. Materials&Methods
    Ⅶ. References

    본문내용

    Ⅰ. Title
    cell culture, Genomic DNA Isolation

    Ⅱ. Abstract

    세포에 대한 연구는 모든 생명과학 분야 및 여러 응용과학의 기초가 된다. 여러 실험에 사용하기 위해서는 세포의 인공적인 배양이 필수적이다. 최근에는 HEK 293T cell line이 mammalian cell을 사용한 연구에 자주 사용된다. 이는 성장 및 유지환경 등에서의 관리가 쉬워 세포의 배양이 용이하다고 하는데, HEK293T cell cultrue을 진행해 세포의 완전한 성장이 언제쯤인지, 세포의 모양은 어떤지 관찰하고자 하였다. 모든 세포는 유전물질로 DNA를 가지는데, DNA의 종류 중 genomic DNA는 생물이 생명을 유지하는데 필요한 단백질들을 만드는 유전정보가 있으므로 생체 내에서 중요한 역할을 한다. 또한, DNA와 함께 RNA도 유전정보를 포함하는 핵산인데, 이는 단백질 합성에서 주형 역할을 하는 mRNA와 펩타이드 결합의 생성을 촉진하는 tRNA, 번역단계에서 촉매작용을 하는 rRNA 등 여러 종류가 존재한다. 따라서, genomic DNA와 mRNA, tRNA, rRNA등을 모두 포함한 total RNA를 HEK293T cell에서 추출하여 전기영동을 통해 이들의 존재 여부 및 크기 등을 관찰하고자 한다.
    세포의 배양에는 DMEM 배지와 FBS를 사용하였으며, Trypsin-EDTA로 바닥의 cell을 떼어낸 뒤 원심분리로 cell pellet만을 남겨주었다. 이후 DMEM배지를 cell pellet에 넣어 페트리디쉬에 옮겨 37도씨에서 배양하였다. genomic DNA의 추출은 cell을 원심분리를 통해 모은 뒤 lysis의 과정을 거쳐 세포를 용해시킨 후, 단백질을Genomic DNA extraction buffer과 Proteinase K로 변성 및 분해시켰다. RNA는 RNase로 제거하였다. 단백질과 RNA 제거에 쓰인 용액들을 sodum acetate, phenol,chloroform, 알코올 건조를 통해 제거하고 genomic DNA만 추출하였다. 이후 전기영동해 DNA band를 확인하였다. total RNA의 추출은 cell을 원심분리를 통해 모은 뒤 TRIzol(TRI Reagent)로 cell을 용해시켰다. 이후 chloroform을 넣고 원심분리한 후 생긴 3개의 층 중 aquaphase에서 RNA를 추출해 전기영동해 band를 확인하였다.

    출처 : 해피캠퍼스

  • [과탑 A+받은 레포트]A+++ 성인실습 췌장암 Pancreas Cancer 케이스 레포트

    목차

    1. 일반정보

    2. 병력(간호사정)

    3. 문헌고찰

    4. 신체검진

    5. 기호습관

    6. 임상소견
    1) 혈액검사
    2) 진단검사

    7. 약물

    8. 진단명, 현재상태 진술

    9. 간호과정

    참고문헌

    본문내용

    1. 일반정보
    실습병동 00병동 환자이름 이00 나이 00세
    성별 남 입원일 00.00.00. 진단명 pancreas cancer
    입원기간 00.00.00. ~
    교육정도 모름
    결혼상태 기혼
    직 업 모름

    2. 병력(간호사정)
    *주호소: Pancreas cancer
    *현병력 1) 입원까지의 경과
    pancreas cancer로 본원 GS f/u하시는 분으로 12th folfirinox CTx 후, CT상 SD 소견 보여서 Pancreatectomy 위해 입원옴.

    2) 입원부터 현재까지의 경과
    DIstal Pancreatectomy 이후 항암 치료 계속 진행할 예정이며 합병증 없고 stable하면 퇴원할 예정.

    *과거병력 DM, HTN, BPH, 고지혈증, 범혈구 감소증
    *가족력 없음
    *수술력 없음
    *약물력 하이엘정 1T #1PC, 자누메트엑스알서방정 50/500mg 2T #2PC,
    큐로이드정&타이날캡슐 1T #HS

    3. 문헌고찰
    [Pancreas Cancer]
    정의: 췌장암은 5년 생존율이 5% 이하로 알려진 예후가 안 좋은 암이다. 췌장암의 불량한 예후는 생
    물학적 특성과 수술적 절제가 어려운데 그 원인이 있다. 대부분이 진행된 병기에 발견되어 수술
    적 절제가 가능한 경우는 20% 이내이고, 절제를 하여도 미세 전이 및 림프절 재발이 많다.

    증상: 통증, 체중감소, 오심, 구토, 지방변, 장관 폐쇄, 담도 폐쇄, 췌장기능 소실, 식욕부진, 악액질,
    우울증, 황달

    발병원인: 췌장암의 병인이 완전히 밝혀진 것은 아니지만 나이와 흡연이 강력한 위험인자라고 알려져
    있으며 그 밖에 만성 췌장염, 고열량, 콜레스테롤과 육류의 섭취도 위험인자로 알려져 있다.

    출처 : 해피캠퍼스

  • Stenotrophomonas maltophilia 유래 Oleate Hydratase와 Alcohol dehydrogenase의 Enzyme cascade reaction

    목차

    1.서론
    2.재료 및 방법
    3.실험 결과
    4.고찰 및 결론
    5.참고문헌

    본문내용

    지방산 hydratase는 unsaturated fatty acids의 C-C 이중결합을 산화한다. 그 중 oleic acid을 10-hydroxysteric acid로 hydroxylation을 촉매하는 oleate hydratase(Ohys)는 비록 낮은 전환율을 가지지만, 체계적인 protein engineering 및 substrate scope의 범위를 넓히고 conversion rate를 높다는 이점으로 최근 산업적으로 특별한 관심을 받고 있다.[1] 본 실험에서는 Ohys 효소 계열 중 하나인 Stenotrophomonas maltophilia oleate hydratase(SmOhyA)의 enzymatic reaction에 대한 kinetic 분석을 진행하였다. SmOhyA는 cofactor로 FAD를 필요로하는 FAD-dependent enzyme이며, unsaturated fatty acids의 9-cis 위치 이중결합에 대해서 선택적으로 수화반응을 일으키는 regioselective hydration을 촉매한다. SmOhy는 특히 oleic acid에 가장 높은 특정 활성을 지니며, polyunsaturated fatty acids(PUFAs)에 대해서는 낮은 활성을 보인다는 특징을 가지고 있다. 효소 단백질의 크기는 대략 68kDa로 측정되며, pH 6인 환경에서 최적의 반응을 보인다. SmOhy의 효소 반응 메커니즘은 아직 구체적으로 밝혀진 바는 없지만, 같은 효소 계열의 Elizabethkingia meningoseptica Oleate Hydratase(EmOhy)와 Staphylococcus aureus Oleate Hatratase(SaOhy)의 반응 메커니즘을 통해 유추할 수 있다.

    출처 : 해피캠퍼스